β-gal半乳糖苷酶检测试剂盒
产品及特点 β-半乳糖苷酶（β-Galactosidase, β-GAL；EC 3.2.1.23）广泛存在于 动物、植物、微生物和培养细胞中，能够催化β半乳糖苷化合物中的β半乳糖 苷键水解，此外还具有转半乳糖苷的作用。β-GAL 不仅可为植物的快速生长 释放储存的能量，还能在正常的多糖代谢、细胞壁组分代谢以及衰老时细胞壁 降解过程中催化多糖、糖蛋白以及半乳糖脂末端半乳糖残基的水解，释放自由 的半乳糖。 本产品是分光光度法测定β-GAL 活力的，测定原理为β-GAL 分解对-硝基 苯-β-D-吡喃半乳糖苷生成对-硝基苯酚，后者在 400 nm 有最大吸收峰，通 过测定吸光值升高速率来计算β-GAL 活性。
规格及成分
运输及保存 低温运输，4℃保存，其中试剂 A 需-20℃保存，有效期半年。
自备试剂 无
使用方法 正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
一、酶液提取
1. 细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细 菌或细胞数量（104个）：酶提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比 例（建议 500 万细菌或细胞加入 1 mL 酶提取液），超声波破碎细菌或 细胞（冰浴，功率 20％或 200 W，超声 3 秒，间隔 10 秒，重复 30 次）； 15000 g 4℃离心 10 分钟，取上清，置冰上待测。
2. 组织：按照组织质量（g）：酶提取液体积（mL）为 1：5~10 的比例（建 议称取约 0.1 g 组织，加入 1 mL 酶提取液），进行冰浴匀浆。15000 g 4℃离心 10 分钟，取上清，置冰上待测。
二、测定操作步骤
1. 分光光度计预热 30 分钟以上，调节波长至 400 nm，蒸馏水调零。
2. 取出试剂 A，临用前向试剂瓶中加入 5 mL 蒸馏水，充分溶解备用，制备 成溶液 A 工作液（用不完的溶液 A 仍需-20℃保存）。
3. 样本测定（在 EP 管中依次加入下列试剂）：
三、酶活性计算公式
标准条件下测定的回归方程为 y=0.00543x -0.0027；x 为标准品浓度 （nmol/mL），y 为吸光值。 注：V 反总：反应总体积，0.5 mL；V 样：反应中样本体积，0.05 mL； V 样总：加入酶提取液体积，1 mL；Cpr：样本蛋白浓度，mg/mL；W： 样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500 万；T：反应时间，30 分钟。
1. 按照样本蛋白浓度计算： 酶活性定义：每 mg 组织蛋白每分钟产生 1 nmol 对-硝基苯酚定义为一 个酶活力单位。 β-GAL 活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反总] ÷(V 样×Cpr)÷T=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr 如果需要另外测定，建议使用本公司 BCA 蛋白质含量测定试剂盒。
2. 按照样本鲜重计算： 酶活性定义：每 g 组织每分钟产生 1 nmol 对-硝基苯酚定义为一个酶活 力单位。 β-GAL 活力(nmol/min/g 鲜重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反总]÷ (W×V 样÷V 样总)÷T=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W
3. 按细菌或细胞密度计算： 酶活性定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟产生 1nmol 对-硝基苯酚定义 为一个酶活力单位。 β-GAL 活力(nmol/min/104cell)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反总] ÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.123×(ΔA +0.0027)
仅用于科研，不能用于临床诊断！所有产品仅供科研使用，不得用于人或动物的治疗等任何其他用途，不为任何个人提供产品和服务。
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